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              基于細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)的復(fù)方丹參片溶出動(dòng)力學(xué)研究

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              摘 要: 摘 要:目的 建立復(fù)方丹參片的細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)模型,以此進(jìn)行復(fù)方丹參片的溶出動(dòng)力學(xué)研究。方法 以實(shí)時(shí)細(xì)胞電子分析技術(shù)(real-time cell-based assay,RTCA)為手段,測(cè)定復(fù)方丹參片的體外溶出度,建立溶出動(dòng)力學(xué)模型,并與紫外分光光度法進(jìn)行比較驗(yàn)證。結(jié)果 CCK-8

                摘 要:目的 建立復(fù)方丹參片的細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)模型,以此進(jìn)行復(fù)方丹參片的溶出動(dòng)力學(xué)研究。方法 以實(shí)時(shí)細(xì)胞電子分析技術(shù)(real-time cell-based assay,RTCA)為手段,測(cè)定復(fù)方丹參片的體外溶出度,建立溶出動(dòng)力學(xué)模型,并與紫外分光光度法進(jìn)行比較驗(yàn)證。結(jié)果 CCK-8 實(shí)驗(yàn)和 RTCA 實(shí)驗(yàn)聯(lián)合篩選出對(duì)復(fù)方丹參片有特定依賴性的細(xì)胞株,建立基于 RTCA 技術(shù)的復(fù)方丹參片溶出動(dòng)力學(xué)模型,得到最佳擬合模型 Weibull 模型 ln{ln[1/(1-Q)]}=1.071 4 lnt-3.736 7;建立基于紫外分光光度法的復(fù)方丹參片溶出動(dòng)力學(xué)模型,得到最佳擬合模型 Weibull 模型 ln{ln[1/(1-Q)]}=1.080 4 lnt-3.723 4;兩者的 Weibull 模型比較,RTCA 擬合的模型效果更佳。結(jié)論 RTCA 技術(shù)應(yīng)用于中藥復(fù)方固體制劑溶出動(dòng)力學(xué)研究,具有可行性,并為中藥及中藥復(fù)方質(zhì)量評(píng)價(jià)提供了新思路。

              基于細(xì)胞生物電傳感效應(yīng)的復(fù)方丹參片溶出動(dòng)力學(xué)研究

                關(guān)鍵詞:復(fù)方丹參片;體外溶出度;實(shí)時(shí)細(xì)胞電子分析技術(shù);溶出動(dòng)力學(xué)模型;CCK-8 實(shí)驗(yàn);Weibull 模型

                中國(guó)傳統(tǒng)醫(yī)藥學(xué)十分重視人體氣、血、津液的正常運(yùn)行,認(rèn)為血瘀證是由氣虛、氣滯、火熱、寒凝等引起,血停滯不行而血行不暢。祛瘀活血法是治療血瘀證的基本方法,在古代經(jīng)典著作《傷寒論》《金匱要略》等中均有活血化瘀法的記載,活血化瘀通過(guò)多種活血化瘀藥物的綜合,具有化瘀行滯的作用,通過(guò)平衡氣血、調(diào)節(jié)陰陽(yáng)與疏通活血等多重作用,幫助患者扶正祛邪,淤血消除,疼痛自然消失[1]。現(xiàn)代臨床研究[2-5]顯示,活血化瘀中藥及其復(fù)方在改善血流動(dòng)力學(xué)、抑制血栓形成、降低血壓、抑制腫瘤疾病上有顯著的臨床療效。隨著活血化瘀中藥及其復(fù)方作用機(jī)制不斷深入研究,證明活血化瘀類中藥對(duì)改善臨床血瘀證具有積極意義,展現(xiàn)出良好的應(yīng)用前景。復(fù)方丹參片作為最為常用的活血化瘀類中成藥之一,由丹參、三七、冰片組成,對(duì)冠心病、心絞痛以及氣滯血瘀所致的胸痹、胸悶等疾病[6],有確切且顯著的療效,被廣泛應(yīng)用于臨床。復(fù)方丹參片由于其藥效物質(zhì)成分較復(fù)雜,仍有許多療效不明的未知成分[7-10],目前所測(cè)的化學(xué)指標(biāo)成分往往與其活血化瘀功效不是直接相關(guān),傳統(tǒng)的以單一化學(xué)指標(biāo)成分為中心的質(zhì)量評(píng)價(jià)方法已不適用,使其質(zhì)量評(píng)價(jià)受到限制,亟需能夠體現(xiàn)整體藥效的新型質(zhì)量評(píng)價(jià)與分析方法的建立。

                本實(shí)驗(yàn)采用了一種新型的電子分析技術(shù)實(shí)時(shí)細(xì)胞電子分析技術(shù)(RTCA)。RTCA 是一種基于阻抗的瞬態(tài)電池-電感應(yīng)連續(xù)記錄系統(tǒng),通過(guò)監(jiān)測(cè)細(xì)胞的動(dòng)態(tài)變化過(guò)程(包括細(xì)胞增殖與分化、凋亡與衰老、黏附等多種細(xì)胞生理狀態(tài)),轉(zhuǎn)換成電信號(hào)細(xì)胞指數(shù)(cell index,CI),并形成時(shí)間劑量依賴性細(xì)胞反應(yīng)曲線(TCRPs),間接反映藥物對(duì)細(xì)胞作用(促進(jìn)或抑制)的強(qiáng)弱,并可據(jù)此評(píng)價(jià)藥物的生物活性[11]。本實(shí)驗(yàn)將 RTCA 應(yīng)用于復(fù)方丹參片血瘀功能相關(guān)的細(xì)胞生物活性的檢測(cè),嘗試篩選出對(duì)藥物反應(yīng)靈敏、穩(wěn)定且有特定濃度依賴性的細(xì)胞株,探索其用于質(zhì)量評(píng)價(jià)的可能性。

                1 材料

                1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

                健康成年 SD 大鼠,雄性,體質(zhì)量 200~240 g,購(gòu)于南京青龍山動(dòng)物養(yǎng)殖場(chǎng),動(dòng)物許可證號(hào) SYXK (蘇)2017-0001。

                1.2 主要試劑與儀器

                CCK-8 溶液(日本同仁化學(xué)研究所);青鏈霉素(Gibco 公司);胎牛血清(FBS,浙江天杭生物科技股份有限公司);磷酸鹽緩沖液(PBS,Gibco 公司)、胰蛋白酶溶液(Gibco 公司);水合氯醛(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,分析純);RTCA 板(杭州艾森生物有限公司);DMEM 培養(yǎng)基(Corning 公司);復(fù)方丹參片(廣西藥用植物園制藥廠,批號(hào) 171101-049);大鼠心肌細(xì)胞(H9C2 細(xì)胞)、人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVEC 細(xì)胞)購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海細(xì)胞庫(kù),大鼠胸主動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞(RA-VSMC 細(xì)胞)來(lái)自大鼠原代分離。

                RC-3 溶出度測(cè)試儀(天津新天光公司); UV-2401 紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)(日本島津公司); HH-4 數(shù)顯恒溫水浴鍋(常州國(guó)華電器有限公司); RTCA 實(shí)時(shí)無(wú)標(biāo)記細(xì)胞分析儀(杭州艾森生物有限公司);Sorvall ST16R 臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)、Sorvall ST16R 臺(tái)式低速離心機(jī)(美國(guó) Thermo 公司);3111 型 CO2 培養(yǎng)箱(美國(guó) Thermo 公司);渦旋振蕩儀(美國(guó) Bio-Rad 公司);ECLIPSE Ti-S 型倒置顯微鏡(日本 Nikon 公司);1300 SERIES A2 生物安全柜(美國(guó) Thermo 公司)。

                2 方法與結(jié)果

                2.1 CCK-8 法篩選復(fù)方丹參片作用細(xì)胞的合適質(zhì)量濃度

                2.1.1 HUVEC 或 H9C2 細(xì)胞的培養(yǎng) 將復(fù)蘇的 HUVEC 或 H9C2 細(xì)胞置于飽和濕度的細(xì)胞培養(yǎng)箱中,用含 10% FBS 的 DMEM 培養(yǎng)基,在 37 ℃、 5% CO2 條件下培養(yǎng)細(xì)胞至 85%融合度時(shí),用 0.25% 胰蛋白酶消化傳代,倒置顯微鏡中觀察,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于細(xì)胞實(shí)驗(yàn)。

                2.1.2 RA-VSMC 細(xì)胞的制備及培養(yǎng) 取體質(zhì)量約 220 g SD 大鼠,ip 10%水合氯醛溶液(35 mL/kg),待大鼠麻醉后處死,迅速剪開(kāi)胸腔并剪取大鼠胸主動(dòng)脈組織,立即放入預(yù)冷的含 PBS 的 DMEM 培養(yǎng)基(含 1×105 U/L 青鏈霉素),并反復(fù)不斷洗滌。用手術(shù)鑷輕輕刮去血管外膜及血管內(nèi)膜,將血管剪成 1 mm3 左右的小塊,分別均勻平鋪于培養(yǎng)皿中,向培養(yǎng)皿中加入含 20% FBS 的培養(yǎng)液 3~5 mL,置于 37 ℃、5% CO2 的飽和濕度細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),直至傳代,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞用于細(xì)胞實(shí)驗(yàn)。

                2.1.3 復(fù)方丹參片供試樣品的制備 取復(fù)方丹參片適量,置于研缽內(nèi)搗碎,取 0.32 g,精密稱定,置于 50 mL 量瓶?jī)?nèi),加入適量 pH 6.8 的 PBS 溶液,超聲 30 min 溶解,再加入 pH 6.8 的 PBS 溶液定容至刻度,濾過(guò)不溶物質(zhì)(輔料的殘?jiān)?,4 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆谩H∩鲜鋈芤合♂尣煌稊?shù)配成 0、1.0、1.25、 1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、6.4 mg/mL 的藥液用于 CCK-8 實(shí)驗(yàn)。

                2.1.4 細(xì)胞種板及給藥 取正常培養(yǎng)的處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,1 000 r/min 離心 5 min,計(jì)數(shù)板下計(jì)數(shù),調(diào)整細(xì)胞密度為 2×104個(gè)/mL,鋪 96 孔板,每孔均加入 100 μL 細(xì)胞懸液,貼壁培養(yǎng)過(guò)夜后,加入不同質(zhì)量濃度(1.0、1.25、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、 6.4 mg/mL)的復(fù)方丹參片供試樣品,48 h 后每孔加入 10 μL 的 CCK-8 檢測(cè)液,設(shè)置對(duì)照孔,37 ℃避光孵育 60 min,在波長(zhǎng) 450 nm 測(cè)定吸光度(A)值,計(jì)算細(xì)胞存活率(細(xì)胞存活率=A 實(shí)驗(yàn)/A 對(duì)照)。CCK-8 檢測(cè)結(jié)果見(jiàn)圖 1、2,HUVEC 和 H9C2 細(xì)胞在復(fù)方丹參片 1.0~6.4 mg/mL 反應(yīng)靈敏,細(xì)胞存活率由高降到最低,可作為這 2 種細(xì)胞篩選的質(zhì)量濃度范圍,因此選擇 0、0.3、0.6、1.0、1.4、1.8、2.2、2.6 mg/mL 這 8 個(gè)質(zhì)量濃度。由圖 2 可知,RA-VSMC 細(xì)胞在復(fù)方丹參片1.0~2.5 mg/mL時(shí)細(xì)胞存活率一直處于穩(wěn)定水平,未顯示差異,而在復(fù)方丹參片 4.0~6.4 mg/mL 時(shí),細(xì)胞存活率下降幅度較大。為了更清楚地觀察該細(xì)胞在復(fù)方丹參片不同質(zhì)量濃度下的作用,需要拉大低質(zhì)量濃度的間隔,縮小高質(zhì)量濃度的間隔,因此選擇 0、0.5、1、2、4、4.5、5、6 mg/mL 這 8 個(gè)質(zhì)量濃度。

                2.2 RTCA 篩選復(fù)方丹參片的特定依賴性細(xì)胞株

                2.2.1 RTCA 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞培養(yǎng) 各細(xì)胞培養(yǎng)方法同 “2.1.1”和“2.1.2”項(xiàng)。

                2.2.2 復(fù)方丹參片 RTCA 實(shí)驗(yàn)樣品的制備 取復(fù)方丹參片適量,置于研缽內(nèi)搗碎,取 0.32 g,精密稱定,置于 50 mL 量瓶?jī)?nèi),加入適量 pH 6.8 的 PBS 溶液,超聲 30 min 溶解,再加入 pH 6.8 的 PBS 溶液定容至刻度,濾過(guò)不溶物質(zhì),4 ℃儲(chǔ)存?zhèn)溆谩H∩鲜鋈芤合♂尣煌稊?shù)配成 0.3、0.6、1.0、1.4、1.8、 2.2、2.6 mg/mL 的藥液用于 HUVEC 細(xì)胞和 H9C2 細(xì)胞實(shí)驗(yàn),另取上述溶液稀釋不同倍數(shù)配成 0.5、 1.0、2.0、4.0、4.5、5.0、6.0 mg/mL 的藥液用于 RA-VSMC 細(xì)胞實(shí)驗(yàn)。

                2.2.3 RTCA測(cè)定 依據(jù)復(fù)方丹參片的藥理作用[12-14],本實(shí)驗(yàn)選取 HUVEC、H9C2、RA-VSMC 細(xì)胞,采用 RTCA 技術(shù),測(cè)定 CI 值,測(cè)定各個(gè)樣本的 TCRPs 曲線,通過(guò)直觀判斷和統(tǒng)計(jì)分析,考察細(xì)胞對(duì)藥物效應(yīng)反應(yīng)的靈敏度、穩(wěn)定性及濃度梯度依賴性。首先在細(xì)胞檢測(cè)板中每個(gè)小孔加入 50 μL 生長(zhǎng)介質(zhì),再加入密度為 2×104 個(gè)/mL 的特定細(xì)胞懸液 100 μL。將此細(xì)胞檢測(cè)板在室溫下放置 30 min 后,放到培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng)。24 h 后,當(dāng)細(xì)胞數(shù)量穩(wěn)定時(shí),取 HUVEC 細(xì)胞和 H9C2 細(xì)胞的細(xì)胞檢測(cè)板,除對(duì)照組外,向每孔中加入配好的復(fù)方丹參片供試藥液 50 μL,使小孔內(nèi)的藥液終質(zhì)量濃度分別為 0.3、0.6、 1.0、1.4、1.8、2.2、2.6 mg/mL,每個(gè)質(zhì)量濃度設(shè) 3 個(gè)復(fù)孔。另取 RA-VSMC 細(xì)胞的細(xì)胞檢測(cè)板,除對(duì)照組外,向每個(gè)孔中分別加入終質(zhì)量濃度 0.5、1.0、 2.0、4.0、4.5、5.0、6.0 mg/mL 的復(fù)方丹參片供試樣品 50 μL,每個(gè)質(zhì)量濃度設(shè) 3 個(gè)復(fù)孔。將加好樣的檢測(cè)板放入實(shí)時(shí)細(xì)胞電子分析儀中,檢測(cè) 72 h,測(cè)出各藥液作用于細(xì)胞后所產(chǎn)生的 TCRPs 曲線,篩選出對(duì)復(fù)方丹參片具有較好濃度依賴性響應(yīng)的細(xì)胞株(即在一定時(shí)間內(nèi)不同質(zhì)量濃度藥物的 TCRPs 曲線明顯分開(kāi))。結(jié)果見(jiàn)圖 3 和 4。

                由圖 3 可以看出,HUVEC 細(xì)胞對(duì)不同質(zhì)量濃度的復(fù)方丹參片反應(yīng)較靈敏,給藥后 CI 值有明顯波動(dòng)。給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對(duì)照組促進(jìn) CI 值的增加,在一段時(shí)間后趨向平穩(wěn)。CI 值在高質(zhì)量濃度樣品組作用下先快速增加,隨即大幅度減少, 2.6 mg/mL 樣品作用強(qiáng)烈,其 40 h 后 CI 值趨近于 0。給藥后期,與對(duì)照組相比較,低質(zhì)量濃度樣品組對(duì) CI 值起促進(jìn)作用,高質(zhì)量濃度樣品組對(duì) CI 值起抑制作用。但是,后期不同質(zhì)量濃度樣品所對(duì)應(yīng)的曲線有重疊現(xiàn)象,難以區(qū)分,沒(méi)有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性,無(wú)法為后期實(shí)驗(yàn)做準(zhǔn)備。

                H9C2 細(xì)胞對(duì)不同質(zhì)量濃度的樣品反應(yīng)也較靈敏。給藥后 CI 值均出現(xiàn)明顯波動(dòng)。給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對(duì)照組對(duì) CI 值起促進(jìn)作用,質(zhì)量濃度越低,促進(jìn)作用越強(qiáng),在一段時(shí)間后趨向平穩(wěn)。高質(zhì)量濃度樣品組對(duì) CI 值起抑制作用,且質(zhì)量濃度越高,其抑制作用越強(qiáng)。整體來(lái)看,不同質(zhì)量濃度所對(duì)應(yīng)的曲線呈現(xiàn)較好的分離,H9C2 對(duì)樣品也有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性,可以作為后期實(shí)驗(yàn)的細(xì)胞。從 CI 值變化來(lái)看,有效的質(zhì)量濃度范圍應(yīng)是 0.3~1.8 mg/mL。

                圖 4 可見(jiàn),給藥初期,低質(zhì)量濃度樣品組及對(duì)照組對(duì) RA-VSMC 細(xì)胞 CI 值起促進(jìn)作用,但幅度較小。高質(zhì)量濃度樣品組對(duì)細(xì)胞的作用過(guò)于強(qiáng)烈,導(dǎo)致 CI 值快速趨于 0,細(xì)胞接近凋亡。并且, RA-VSMC 細(xì)胞沒(méi)有明顯的質(zhì)量濃度梯度依賴性。

                綜上,選擇 H9C2 細(xì)胞作為復(fù)方丹參片溶出度評(píng)價(jià)的細(xì)胞。

                2.3 基于 RTCA 的復(fù)方丹參片溶出度的測(cè)定及動(dòng)力學(xué)模型的建立

                2.3.1 溶液的配制 (1)空白人工胃液的配制:按照《中國(guó)藥典》2015 年版四部,取稀鹽酸 16.4 mL,加水約 800 mL 與胃蛋白酶 10 g,搖勻使其充分溶解后,加水稀釋定容至 1 000 mL,即為人工胃液。空白人工胃液的配制:除不含胃蛋白酶外,其余與人工胃液配制相同[15]。(2)空白人工腸液的配制:按照《中國(guó)藥典》2015 年版四部,取磷酸二氫鉀 6.8 g,加水 500 mL 使其溶解,用 0.1 mol/L 氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié) pH 值至 6.8;另外稱取 10 g 胰蛋白酶加適量水溶解,將 2 液混合后,加水定容至 1 000 mL,即為人工腸液。空白人工腸液的配制:除不含胰蛋白酶外,其余與人工腸液配制相同[15]。(3)磷酸鹽緩沖液(pH 7.4)的配制:按照《中國(guó)藥典》2015 年版四部,取磷酸二氫鉀 1.36 g,加 0.l mol/L 氫氧化鈉溶液 79 mL,用水稀釋至 200 mL,即得。

                2.3.2 復(fù)方丹參片溶出度供試樣品的制備 (1)不同溶出時(shí)間樣品:

                取空白人工胃液 1 000 mL 置溶出杯中,加熱至 37 ℃,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)籃轉(zhuǎn)速為 100 r/min,將精密稱定質(zhì)量的復(fù)方丹參片分別放入轉(zhuǎn)籃內(nèi),以空白人工胃液接觸藥片時(shí)為零時(shí)刻開(kāi)始計(jì)時(shí),然后按 10、20、30、40、50、60、70 min 定時(shí)取樣,每次取樣 10 mL(立即補(bǔ)充同溫同體積的空白人工胃液),用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8(模擬腸液環(huán)境),取 10 mL 于蒸發(fā)皿水浴蒸干,用 3 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液溶解,微孔濾膜濾過(guò),取續(xù)濾液即得。(2)完全溶出樣品:另取復(fù)方丹參片 10 片,精密稱定,計(jì)算出平均片質(zhì)量(W),將稱定的片劑研細(xì),再精密稱取相當(dāng)于 W 的量,置 1 000 mL 量瓶中,加入空白人工胃液至刻度,混勻,置于(37.0±0.5)℃ 水浴中 2 h 以上,每隔 15 min 振搖 1 次。冷至室溫,取 10 mL,用 pH 7.4 的磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,精確測(cè)量體積,于蒸發(fā)皿水浴蒸干,用 3 mL 細(xì)胞培養(yǎng)液溶解,微孔濾膜濾過(guò),取續(xù)濾液即得。

                2.3.3 CI 測(cè)定 將 H9C2 細(xì)胞置于含 10% FBS 的 DMEM 培養(yǎng)基中、在 37 ℃下、5% CO2、飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞,800 r/min 離心 5 min,計(jì)數(shù)板下計(jì)數(shù),調(diào)整細(xì)胞濃度至 2×104 個(gè)/mL,RTCA 板每孔中加入 100 μL 細(xì)胞懸液,貼壁培養(yǎng)過(guò)夜,24 h 后,換液,按照要求加入“2.3.2” 項(xiàng)下的復(fù)方丹參片溶出度供試樣品溶液 200 μL,繼續(xù)檢測(cè) 72 h,得到樣品溶液作用于 H9C2 細(xì)胞后所產(chǎn)生的 TCRPs 曲線,結(jié)果見(jiàn)圖 5。

                由圖 5 可知,溶出時(shí)間短的樣品對(duì) CI 呈促進(jìn)趨勢(shì),溶出時(shí)間長(zhǎng)的樣品對(duì) CI 呈抑制趨勢(shì)。加藥前 CI 上升,加藥后 1~2 h 內(nèi) CI 下降較快,2 h 后溶出時(shí)間短的樣品組 CI 呈穩(wěn)定上升趨勢(shì),溶出時(shí)間長(zhǎng)的樣品 CI 持續(xù)下降,說(shuō)明細(xì)胞在給藥 1~2 h 內(nèi)受藥物影響最大,且呈現(xiàn)一定的質(zhì)量濃度梯度依賴性,故選擇圖 5 所示 24.10~25.85 h 的數(shù)據(jù)(表 1)進(jìn)行累積溶出率(Q)計(jì)算,并繪制溶出曲線(圖 6)。 Q=(CIi-CIck)/(CI0-CIck) CIi 指各時(shí)間點(diǎn)溶出樣品的 CI 值,CIck 指不加藥物時(shí)的 CI 值,CI0指藥物完全溶出時(shí)的 CI 值

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                2.3.4 復(fù)方丹參片的 CI 溶出動(dòng)力學(xué)模型擬合 為更好地考察復(fù)方丹參片的溶出情況,將利用一定的已知數(shù)學(xué)模型對(duì)該溶出過(guò)程進(jìn)行擬合,這也是釋藥機(jī)制研究的常用方法。目前的模型主要有零級(jí)模型、一級(jí)模型、Weibull 模型、Higuchi 模型、Ritger-Peppas 模型等。其中零級(jí)模型考察是否恒速釋藥,一級(jí)模型考察是否非恒速釋藥。Weibull 模型應(yīng)用廣泛,幾乎適用于所有溶出曲線。Higuchi 模型主要用于研究緩釋制劑等,Ritger-Peppas 模型主要用于研究圓球型制劑的釋放機(jī)制。考慮到本實(shí)驗(yàn)中復(fù)方丹參片的制劑特點(diǎn),選用零級(jí)模型、一級(jí)模型及 Weibull 模型進(jìn)行擬合。結(jié)果見(jiàn)表 2。可知,復(fù)方丹參片的累積溶出率與時(shí)間有很好的相關(guān)性,且與上述模型具有較好的擬合度,其中最佳擬合模型為 Weibull 模型。

                2.4 紫外分光光度法測(cè)定復(fù)方丹參片的溶出度及擬合模型的建立

                2.4.1 線性關(guān)系考察 量取“2.3.2”項(xiàng)下復(fù)方丹參片完全溶出溶液適量,用 pH 7.4 的磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,濾過(guò),將此時(shí)的濾液作為 100%溶出量,并用 pH 6.8 的空白人工腸液稀釋成相對(duì)溶出量為 90%、70%、50%、30%、20%、10%的濃度系列,以 pH 6.8 的人工腸液為空白,測(cè)定在 283 nm 條件下的 A 值。以相對(duì)溶出量為橫坐標(biāo)(X),A 值為縱坐標(biāo)(Y),計(jì)算回歸方程[16],回歸方程為 Y=0.021 8 X-0.002 7,r=0.999 4。

                2.4.2 穩(wěn)定性試驗(yàn) 吸取適量相對(duì)溶出量為50%的溶液,分別在 0、1、2、4、6、12 h 測(cè)定 A 值,結(jié)果分別為 0.064、0.065、0.065、0.066、0.064、0.065, RSD 為 1.16%,RSD<3.0%,表明藥液穩(wěn)定性較好。

                2.4.3 精密度試驗(yàn) 吸取適量復(fù)方丹參片完全溶出的藥液,重復(fù) 6 次測(cè)定 A 值,測(cè)得 A 值分別為 0.127、 0.128、0.128、0.127、0.128、0.128,RSD 為 0.4%, RSD<3.0%,表明該儀器精密度良好。

                2.4.4 樣品溶出度測(cè)定 取復(fù)方丹參片 10 片,精密稱定,計(jì)算出平均片質(zhì)量(W),將稱定的片劑研細(xì),再精密稱取相當(dāng)于 W 的量,置 1 000 mL 量瓶中,加入空白人工胃液至刻度,混勻,置于(37.0±0.5)℃ 水浴中 2 h 以上,每隔 15 min 振搖 1 次。冷至室溫,取 10 mL,用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,取樣,微孔濾膜濾過(guò),取續(xù)濾液用紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)于 283 nm 處測(cè)定 A 值(A 總)。取空白人工胃液 1 000 mL 置溶出杯中,加熱至 37 ℃,調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)籃轉(zhuǎn)速為 100 r/min,將精密稱定質(zhì)量的復(fù)方丹參片 1 片(W1)放入轉(zhuǎn)籃內(nèi),以空白人工胃液接觸藥片時(shí)為零時(shí)刻開(kāi)始計(jì)時(shí),然后按 10、 20、30、40、50、60、70、80 min 定時(shí)取樣 10 mL (立即補(bǔ)充同溫同體積的空白人工胃液),用 pH 7.4 磷酸鹽緩沖液調(diào)節(jié)至 pH 6.8,取樣,微孔濾膜濾過(guò),取續(xù)濾液用紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)于 283 nm 處測(cè)定 A 值(Ai)。按公式計(jì)算 Q。繪制溶出度曲線(圖 7)。 Q=WAi/W1A 總

                2.4.5 復(fù)方丹參片的紫外分光光度法溶出動(dòng)力學(xué)模型擬合 以零級(jí)模型、一級(jí)模型、Weibull 模型對(duì)溶出過(guò)程進(jìn)行擬合,結(jié)果見(jiàn)表 3。復(fù)方丹參片的累積溶出率與時(shí)間有較好的相關(guān)性,與 3 種模型有較好的擬合度,其中與 Weibull 模型的擬合度最佳。——論文作者:馬曉斐 1 ,王建春 2 ,潘金火 1, 2,謝 輝 1 ,陳 軍 1 ,張 倩 1 ,韓星星 1 ,嚴(yán)國(guó)俊 1*

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